Actinobakterien im Stuhltest: Was der Wert aussagt

Was ein Actinobakterien-Test misst

Ein Actinobakterien-Test ermittelt den Anteil dieses Bakterienstamms am Darmmikrobiom. Meist wird dazu die DNA einer Stuhlprobe sequenziert. Das Ergebnis beschreibt die relative Zusammensetzung der Bakteriengemeinschaft zum Zeitpunkt der Entnahme. Es zählt keine einzelnen Bakterienzellen und ist kein unveränderliches persönliches Merkmal.

Actinobakterien sind grampositive Bakterien. Ihre Genome enthalten besonders viele der DNA-Bausteine Guanin und Cytosin, kurz GC. Zu diesem Stamm gehört Bifidobacterium, eine der am besten untersuchten Bakteriengattungen im Darm. Bei Erwachsenen machen Actinobakterien meist nur einen kleinen Teil der Darmbakterien aus, tragen aber zur Stabilität der Darmgemeinschaft bei. Quellenlink 1 Quellenlink 2

Die meisten Mikrobiomberichte nennen sowohl den Anteil des gesamten Stamms als auch die einzelnen Gattungen. Diese Aufschlüsselung hilft, den Gesamtwert einzuordnen.

Actinobacteria, Actinobacteriota und Actinomycetota: ein Stamm, mehrere Namen

Actinobacteria, Actinobacteriota und Actinomycetota bezeichnen denselben Bakterienstamm. Die unterschiedlichen Namen gehen auf Änderungen der wissenschaftlichen Systematik zurück. Ein neuer Name im Befund bedeutet daher nicht, dass andere Organismen gemessen wurden.

Actinomycetes und Actinomycetales bezeichnen Untergruppen innerhalb dieses Stamms. Solche Begriffe erscheinen eher in Untersuchungen von Umweltstaub als in einem Darmmikrobiombericht. Labore übernehmen Namensänderungen zu unterschiedlichen Zeitpunkten. Vor einem Vergleich von Zahlen sollte deshalb klar sein, auf welche taxonomische Ebene sich der jeweilige Wert bezieht.

Welche Aufgaben Actinobakterien im Körper haben

Im Darm

Im Darm vergären Actinobakterien bestimmte Nahrungsbestandteile. Bifidobacterium-Arten bauen Ballaststoffe ab und im Säuglingsalter auch Oligosaccharide aus der Muttermilch, die körpereigene Enzyme des Kindes nicht verdauen können. Dabei entstehen Acetat und Laktat. Diese Stoffwechselprodukte sind an den Vorgängen beteiligt, über die Darmmikroben die Versorgung der Dickdarmzellen und Stoffwechselsignale beeinflussen. Quellenlink 1 Quellenlink 2

Die Bakterien nutzen dabei auch die Stoffwechselprodukte anderer Arten. Acetat aus Bifidobacterium adolescentis dient beispielsweise benachbarten Bakterien zur Butyratbildung. Actinobakterien können so Organismen unterstützen, die im Befund anderen Gruppen zugeordnet werden. Kurzkettige Fettsäuren beeinflussen außerdem die Aktivität von Immunzellen. Quellenlink 1 Quellenlink 2

Jenseits des Darms: Haut, Mund und Atemwege

Actinobakterien besiedeln auch andere Körperregionen. Cutibacterium- und Corynebacterium-Arten kommen häufig auf der Haut und in der Nase vor. Auch Mycobacterium gehört zu diesem Stamm. Bodenbewohnende Streptomyces-Arten lieferten die Grundlage für zahlreiche Antibiotika. Ein Stuhltest erfasst jedoch ausschließlich die untersuchte Darmgemeinschaft.

Was ein Actinobakterienprofil erkennen lässt

Der Anteil der Actinobakterien zeigt, wie stark diese Gruppe innerhalb des Darmmikrobioms vertreten ist. Im Profil können sich Veränderungen nach Antibiotika, einer eingeschränkten Ernährung, Reisen oder starkem Stress widerspiegeln.

Das Darmmikrobiom steht mit Verdauung, Immunfunktion und Stoffwechsel in Verbindung. Diese Zusammenhänge betreffen jedoch die gesamte Gemeinschaft. Der Anteil eines einzelnen Bakterienstamms liefert deshalb nur einen Teil der Informationen. Quellenlink

Drei unterschiedliche Untersuchungen heißen „Actinobakterien-Test“

Unter dieser Bezeichnung werden drei verschiedene Untersuchungen angeboten. Ihre Ergebnisse beantworten unterschiedliche Fragen und sind nicht austauschbar.

Dieser Artikel behandelt den kommerziellen Stuhl-Mikrobiomtest. Er erfasst die Zusammensetzung einer Bakteriengemeinschaft und gibt die einzelnen Gruppen als prozentualen Anteil an.

Umwelttests suchen dagegen nach Actinomyceten in Gebäudestaub, etwa bei der Untersuchung eines Schimmel- oder Wasserschadens. Die klinische Erregeridentifizierung wiederum untersucht ein aus einer Patientenprobe angezüchtetes Isolat im medizinischen Labor.

Wie der Stuhltest abläuft

Das Probenahmeset enthält meist einen Tupfer oder ein Röhrchen, eine Stabilisierungslösung und eine vorfrankierte Rücksendemöglichkeit.
Eine kleine Stuhlprobe wird zu Hause nach der Anleitung des Sets entnommen.
Die Probe wird verschlossen, mit der Probenkennung und dem Entnahmedatum beschriftet und zeitnah verschickt.
Das Labor isoliert die mikrobielle DNA und untersucht sie mittels 16S-rRNA-Gensequenzierung oder Shotgun-Metagenomik. Die Verfahren unterscheiden sich darin, wie genau sie Bakterien taxonomisch zuordnen können. Quellenlink
Eine Software gleicht die Sequenzen mit einer Referenzdatenbank ab. Der Bericht nennt den Anteil der Actinobakterien und ordnet ihn anhand einer Vergleichsgruppe ein.

Die Art der Entnahme ist dabei relevant. Sowohl das Probenahmeverfahren als auch die Tageszeit können das Ergebnis messbar beeinflussen. Für Verlaufskontrollen sollten die Bedingungen möglichst gleich bleiben. Quellenlink

Wie das Labor den Wert angibt

Mikrobiomberichte verwenden Fachbegriffe, deren Bedeutung für die Interpretation entscheidend ist.

Besonders wichtig ist die „relative Häufigkeit“. Sie beschreibt einen Anteil, keine absolute Zellzahl. Nimmt eine Gruppe zu, sinken rechnerisch die Anteile anderer Gruppen, selbst wenn deren absolute Zahl unverändert bleibt. Quellenlink

Wie sich das Ergebnis einordnen lässt

Für den Gesamtanteil der Actinobakterien gibt es keinen validierten klinischen Grenzwert. Fachleute raten grundsätzlich zur Zurückhaltung bei der medizinischen Interpretation kommerzieller Mikrobiomtests. Relevant sind die Skala des Labors, die Aufschlüsselung nach Gattungen, vorhandene Beschwerden und frühere Ergebnisse. Quellenlink

Ein Referenzbereich zeigt, welche Werte in der Vergleichsgruppe des Labors häufig vorkommen. Er definiert keinen optimalen persönlichen Zielwert. Verschiedene Methoden und Vergleichsgruppen können dazu führen, dass dieselbe Probe von zwei Laboren unterschiedlich eingeordnet wird.

Ein höherer Anteil

Ein höherer Actinobakterien-Anteil kann auf viele Bifidobakterien hinweisen, etwa bei ballaststoffreicher Ernährung. Auch kürzlich eingenommene Pro- oder Präbiotika kommen als Erklärung infrage. Der Anteil kann aber ebenso steigen, weil eine andere dominante Gruppe abgenommen hat. Die Aufschlüsselung nach Gattungen hilft, diese Möglichkeiten einzuordnen.

Ein niedrigerer Anteil

Niedrigere Anteile werden unter anderem nach Antibiotika sowie bei ballaststoffarmer, stark eingeschränkter oder wenig abwechslungsreicher Ernährung beobachtet. Ein niedriger Bifidobacterium-Anteil zusammen mit einem niedrigen Anteil des gesamten Bakterienstamms wird auch im Zusammenhang mit Verstopfung und Blähungen nach ballaststoffreichen Mahlzeiten diskutiert. Aus dem niedrigen Wert allein lässt sich jedoch keine Diagnose ableiten.

Actinobakterien und andere häufige Darmbakterienstämme

Actinobakterien gehören zu den Bakterienstämmen, die Mikrobiomtests regelmäßig ausweisen. Ihr Anteil ist meist klein. Im Darm Erwachsener dominieren zwei andere Stämme, während die übrigen deutlich geringere Anteile ausmachen. Quellenlink

Manche Berichte geben zusätzlich Verhältnisse zwischen den Bakterienstämmen an, um deren Anteile zueinander ins Verhältnis zu setzen.

Was das Messergebnis beeinflussen kann

Mehrere alltägliche Einflüsse können das Ergebnis verändern. Für die Interpretation ist deshalb wichtig, unter welchen Bedingungen die Probe entstand.

Kürzlich eingenommene Antibiotika können Teile der Bakteriengemeinschaft über Monate vermindern. In Untersuchungen war die Erholung nach sechs Monaten noch unvollständig. Quellenlink
Pro- oder Präbiotika in den Wochen vor der Probenentnahme.
Eine plötzliche Ernährungsumstellung: Sie kann das Darmmikrobiom innerhalb weniger Tage verändern. Quellenlink
Stuhlkonsistenz und Darmpassagezeit beeinflussen, welche Zusammensetzung die Probe zeigt.
Entnahmezeitpunkt und Probenhandhabung können die gemessene Zusammensetzung und die Stoffwechselprodukte verändern. Quellenlink
Akute Erkrankungen, Fieber oder Magen-Darm-Infektionen rund um den Entnahmezeitpunkt.
Unterschiedliche Methoden: 16S- und Shotgun-Sequenzierung liefern unterschiedliche taxonomische Profile. Ergebnisse verschiedener Labore sind deshalb nicht ohne Weiteres vergleichbar. Quellenlink

Was den Anteil der Actinobakterien verändern kann

Am besten untersucht ist, wie die verfügbaren Nährstoffe den Anteil der Actinobakterien beeinflussen.

Fermentierbare Ballaststoffe: Interventionsstudien zeigen, dass eine höhere Aufnahme den Anteil von Bifidobakterien steigern kann. Quellenlink
Präbiotika: GOS, FOS und Inulin gehören zu den Substraten, die Bifidobakterien bevorzugt verwerten können.
Bestimmte probiotische Stämme: Die klinischen Ergebnisse sind gemischt. Ein höherer Bifidobacterium-Anteil geht nicht automatisch mit weniger Beschwerden einher. Eine Dosisfindungsstudie zu Bifidobacterium lactis HN019 bei funktioneller Verstopfung fand keine Wirkung auf die Darmpassagezeit. Auch eine spätere randomisierte Studie zeigte beim Stuhlgang keinen Vorteil gegenüber Placebo. Quellenlink 1 Quellenlink 2

Auch andere Lebensgewohnheiten stehen mit dem Darmmikrobiom in Verbindung. Schlafqualität und mikrobielle Vielfalt sind miteinander assoziiert; Darm und Gehirn beeinflussen sich gegenseitig. Körperliche Aktivität geht ebenfalls mit Veränderungen der mikrobiellen Zusammensetzung einher. Fermentierte Lebensmittel und das Vermeiden unnötiger Antibiotikabehandlungen sind weitere mögliche Einflussfaktoren. Quellenlink 1 Quellenlink 2 Quellenlink 3

Welche Ballaststoffe oder probiotischen Stämme in welcher Menge infrage kommen, lässt sich im Zusammenhang mit Beschwerden und Ernährung ärztlich oder ernährungstherapeutisch besprechen.

Welche Zusammenhänge die Forschung untersucht

Viele Untersuchungen zu Actinobakterien beschreiben Zusammenhänge, ohne Ursache und Wirkung nachzuweisen. Bei Reizdarmsyndrom wurden niedrigere Bifidobakterien-Anteile beobachtet. Bei chronisch-entzündlichen Darmerkrankungen fallen die Ergebnisse weniger einheitlich aus. Beide Forschungsfelder untersuchen, wie die Zusammensetzung des Mikrobioms mit Erkrankungen zusammenhängt. Quellenlink 1 Quellenlink 2 Quellenlink 3

Bifidobakterien prägen die Darmbesiedlung gesunder Säuglinge und sind für die Entwicklung des Immunsystems von Bedeutung. Auch die Rolle mikrobieller kurzkettiger Fettsäuren bei der Regulation der Immunfunktion wird untersucht. Quellenlink 1 Quellenlink 2

Ein in einer Personengruppe beobachteter Zusammenhang belegt keine Ursache. Er lässt sich auch nicht unmittelbar auf einen einzelnen Laborbefund übertragen.

Die Grenzen eines Ergebnisses auf Stammebene

Der Gesamtanteil eines Bakterienstamms fasst viele Organismen zusammen. Für die Interpretation gelten mehrere Einschränkungen.

Die relative Häufigkeit ist ein Anteil an der Gemeinschaft. Weil alle Anteile zusammen eine Gesamtheit bilden, verändert die Zunahme einer Gruppe rechnerisch die übrigen Anteile. Quellenlink
Es gibt keine validierten klinischen Grenzwerte für Actinobakterien auf Stammebene.
Ergebnisse verschiedener Labore sind nur eingeschränkt vergleichbar, weil unterschiedliche Sequenzierungsverfahren unterschiedliche taxonomische Profile erzeugen. Quellenlink
Eine einzelne Probe bildet die persönliche Schwankungsbreite nicht ab. Über Jahre können Mikrobiome eine individuelle Grundstruktur behalten, die sich durch wiederholte Proben besser erkennen lässt. Quellenlink
Für die Verlaufseinordnung können Veränderungen innerhalb derselben Person hilfreicher sein als ein Vergleich mit dem Durchschnitt einer anderen Gruppe.

Der Test beschreibt die Zusammensetzung des Mikrobioms und kann Veränderungen im Verlauf abbilden. Er diagnostiziert keine Erkrankung.

Wann eine Messung und eine Verlaufskontrolle infrage kommen

Vor einer Messung sollte feststehen, welche Frage sie beantworten soll. Anlässe können anhaltende Verdauungsbeschwerden, eine kürzliche Antibiotikabehandlung oder eine geplante Ernährungsumstellung sein. Ob ein Mikrobiomtest dafür hilfreiche Informationen liefert, muss im jeweiligen Zusammenhang beurteilt werden.

Nach einer Ernährungsumstellung können frühe Veränderungen vorübergehend sein. Für eine Verlaufskontrolle lassen sich stabilere Bedingungen eher nach mehreren Wochen bis einigen Monaten gleichbleibender Gewohnheiten erreichen. Labor, Methode, Tageszeit und Ernährung rund um die Entnahme sollten möglichst vergleichbar sein.

Wann Beschwerden ärztlich abgeklärt werden sollten

Folgende Beschwerden oder Risikofaktoren sollten unabhängig vom Mikrobiombericht ärztlich besprochen werden:

Blut im Stuhl oder schwarzer, teeriger Stuhl
Unbeabsichtigter Gewichtsverlust
Anhaltende oder starke Bauchschmerzen
Fieber zusammen mit Verdauungsbeschwerden
Beschwerden nach einer Reise oder Antibiotikabehandlung, die nicht abklingen
Chronisch-entzündliche Darmerkrankungen oder Darmkrebs in der Familie

Bei der ärztlichen Beurteilung stehen Krankengeschichte, Beschwerden und etablierte Untersuchungen im Vordergrund. Vorhandene Mikrobiomdaten können in diesen Zusammenhang eingeordnet werden.

Häufig gestellte Fragen

Was misst ein Actinobakterien-Test?

Er ermittelt anhand einer sequenzierten Stuhlprobe den Anteil der Actinobakterien und ihrer Gattungen an der Darmbakteriengemeinschaft. Der Wert beschreibt deren Zusammensetzung, erlaubt aber keine Krankheitsdiagnose.

Wie wird die Probe entnommen?

Die kleine Stuhlprobe wird zu Hause mit dem Tupfer oder Röhrchen des Sets entnommen. Dazu gehören Händewaschen vor und nach der Entnahme, das Vermeiden von Berührungen der Röhrcheninnenseite und eine eindeutige Beschriftung mit Probenkennung und Datum. Für Lagerung und Versand gilt die Anleitung des Anbieters.

Entnahmemethode, Zeitpunkt und Handhabung können die gemessene Zusammensetzung beeinflussen. Quellenlink

Sind Actinobakterien dasselbe wie Bifidobakterien?

Nein. Actinobacteria bezeichnet einen Bakterienstamm, Bifidobacterium eine darin enthaltene Gattung. Im gesunden Darm Erwachsener machen Bifidobakterien meist den größten Teil dieses Stamms aus, weshalb sich beide Werte häufig ähnlich verändern. Zum Stamm gehören aber auch andere Gattungen wie Collinsella. Deshalb lohnt sich die Aufschlüsselung im Bericht.

Wie genau sind Actinobakterien-Tests?

Sequenzierung kann Darmbakterien detailliert zuordnen, doch das Ergebnis bleibt eine Schätzung. Seine Genauigkeit hängt von Probenentnahme, Sequenzierungstiefe, Referenzdatenbank und bioinformatischer Auswertung ab. 16S- und Shotgun-Verfahren können aus derselben Probe unterschiedliche Profile erzeugen. Ein Befund ist daher eine methodenabhängige Momentaufnahme. Quellenlink

Wie oft ist eine erneute Messung sinnvoll?

Der Ausgangstext schlägt für allgemeine Verlaufskontrollen einen jährlichen Abstand vor und bei Ernährungsumstellungen oder neuen Nahrungsergänzungsmitteln drei bis sechs Monate. Ob solche Kontrollen hilfreich sind, hängt von der Fragestellung ab. Vergleichbar werden sie vor allem durch dasselbe Labor, dieselbe Methode und ähnliche Entnahmebedingungen.

Wie schnell kann sich der Anteil verändern?

Eine veränderte Ernährung kann das Darmmikrobiom innerhalb weniger Tage beeinflussen. Auch Antibiotika, Krankheiten oder Reisen können Veränderungen auslösen. Frühe Ausschläge sind oft vorübergehend; eine stabilere Zusammensetzung stellt sich eher über Wochen bis Monate ein. Sehr kurze Testabstände erfassen daher häufig vor allem Schwankungen. Quellenlink

Lässt sich mit dem Test eine Krankheit diagnostizieren?

Nein. Der Befund beschreibt die Zusammensetzung des Mikrobioms. Fachliche Empfehlungen raten zur Zurückhaltung bei seiner isolierten klinischen Interpretation. Ärztlich lässt er sich zusammen mit Beschwerden, Krankengeschichte und etablierten Laboruntersuchungen einordnen. Quellenlink

Können Ballaststoffe oder Probiotika mein Actinobakterien-Ergebnis verändern?

Ja. Ballaststoffe können den Anteil von Bifidobakterien erhöhen. Für einzelne probiotische Stämme wurden unterschiedliche Wirkungen auf Darmbeschwerden beobachtet. Welche Ballaststoffe, Bakterienstämme und Mengen im Einzelfall sinnvoll sind, lässt sich ärztlich oder ernährungstherapeutisch anhand der Ernährung, Beschwerden und vorhandenen Befunde besprechen. Quellenlink

Quellen und Literatur des Ausgangstextes

O’Callaghan A, van Sinderen D. Bifidobacteria and their role as members of the human gut microbiota. Front Microbiol. 2016;7:925. doi:10.3389/fmicb.2016.00925 Quellenlink
Binda C, Lopetuso LR, Rizzatti G, et al. Actinobacteria: a relevant minority for the maintenance of gut homeostasis. Dig Liver Dis. 2018;50(5):421-428. doi:10.1016/j.dld.2018.02.012 Quellenlink
Underwood MA, German JB, Lebrilla CB, Mills DA. Bifidobacterium longum subspecies infantis: champion colonizer of the infant gut. Pediatr Res. 2015;77(1-2):229-235. doi:10.1038/pr.2014.156 Quellenlink
Koh A, De Vadder F, Kovatcheva-Datchary P, Bäckhed F. From dietary fiber to host physiology: short-chain fatty acids as key bacterial metabolites. Cell. 2016;165(6):1332-1345. doi:10.1016/j.cell.2016.05.041 Quellenlink
Rios-Covian D, Gueimonde M, Duncan SH, Flint HJ, de los Reyes-Gavilan CG. Enhanced butyrate formation by cross-feeding between Faecalibacterium prausnitzii and Bifidobacterium adolescentis. FEMS Microbiol Lett. 2015;362(21):fnv176. doi:10.1093/femsle/fnv176 Quellenlink
Mann ER, Lam YK, Uhlig HH. Short-chain fatty acids: linking diet, the microbiome and immunity. Nat Rev Immunol. 2024;24(8):577-595. doi:10.1038/s41577-024-01014-8 Quellenlink
Lynch SV, Pedersen O. The human intestinal microbiome in health and disease. N Engl J Med. 2016;375(24):2369-2379. doi:10.1056/NEJMra1600266 Quellenlink
Rinninella E, Raoul P, Cintoni M, et al. What is the healthy gut microbiota composition? A changing ecosystem across age, environment, diet, and diseases. Microorganisms. 2019;7(1):14. doi:10.3390/microorganisms7010014 Quellenlink
David LA, Maurice CF, Carmody RN, et al. Diet rapidly and reproducibly alters the human gut microbiome. Nature. 2014;505(7484):559-563. doi:10.1038/nature12820 Quellenlink
Faith JJ, Guruge JL, Charbonneau M, et al. The long-term stability of the human gut microbiota. Science. 2013;341(6141):1237439. doi:10.1126/science.1237439 Quellenlink
So D, Whelan K, Rossi M, et al. Dietary fiber intervention on gut microbiota composition in healthy adults: a systematic review and meta-analysis. Am J Clin Nutr. 2018;107(6):965-983. doi:10.1093/ajcn/nqy041 Quellenlink
Ibarra A, Latreille-Barbier M, Donazzolo Y, Pelletier X, Ouwehand AC. Effects of 28-day Bifidobacterium animalis subsp. lactis HN019 supplementation on colonic transit time and gastrointestinal symptoms in adults with functional constipation: a double-blind, randomized, placebo-controlled, and dose-ranging trial. Gut Microbes. 2018;9(3):236-251. doi:10.1080/19490976.2017.1412908 Quellenlink
Cheng J, Gao C, Ala-Jaakkola R, et al. Eight-week supplementation with Bifidobacterium lactis HN019 and functional constipation: a randomized clinical trial. JAMA Netw Open. 2024;7(10):e2436888. doi:10.1001/jamanetworkopen.2024.36888 Quellenlink
Palleja A, Mikkelsen KH, Forslund SK, et al. Recovery of gut microbiota of healthy adults following antibiotic exposure. Nat Microbiol. 2018;3(11):1255-1265. doi:10.1038/s41564-018-0257-9 Quellenlink
Foster JA, Rinaman L, Cryan JF. Stress & the gut-brain axis: regulation by the microbiome. Neurobiol Stress. 2017;7:124-136. doi:10.1016/j.ynstr.2017.03.001 Quellenlink
Smith RP, Easson C, Lyle SM, et al. Gut microbiome diversity is associated with sleep physiology in humans. PLoS One. 2019;14(10):e0222394. doi:10.1371/journal.pone.0222394 Quellenlink
Dziewiecka H, Buttar HS, Kasperska A, et al. Physical activity induced alterations of gut microbiota in humans: a systematic review. BMC Sports Sci Med Rehabil. 2022;14(1):122. doi:10.1186/s13102-022-00513-2 Quellenlink
Jones J, Reinke SN, Ali A, Palmer DJ, Christophersen CT. Fecal sample collection methods and time of day impact microbiome composition and short chain fatty acid concentrations. Sci Rep. 2021;11(1):13964. doi:10.1038/s41598-021-93031-z Quellenlink
Durazzi F, Sala C, Castellani G, Manfreda G, Remondini D, De Cesare A. Comparison between 16S rRNA and shotgun sequencing data for the taxonomic characterization of the gut microbiota. Sci Rep. 2021;11(1):3030. doi:10.1038/s41598-021-82726-y Quellenlink
Gloor GB, Macklaim JM, Pawlowsky-Glahn V, Egozcue JJ. Microbiome datasets are compositional: and this is not optional. Front Microbiol. 2017;8:2224. doi:10.3389/fmicb.2017.02224 Quellenlink
Porcari S, Mullish BH, Asnicar F, et al. International consensus statement on microbiome testing in clinical practice. Lancet Gastroenterol Hepatol. 2025;10(2):154-167. doi:10.1016/S2468-1253(24)00311-X Quellenlink
Pittayanon R, Lau JT, Yuan Y, et al. Gut microbiota in patients with irritable bowel syndrome-a systematic review. Gastroenterology. 2019;157(1):97-108. doi:10.1053/j.gastro.2019.03.049 Quellenlink
Pittayanon R, Lau JT, Leontiadis GI, et al. Differences in gut microbiota in patients with vs without inflammatory bowel diseases: a systematic review. Gastroenterology. 2020;158(4):930-946.e1. doi:10.1053/j.gastro.2019.11.294 Quellenlink

Tabellen des Ausgangstextes

Testtyp	Probe	Ergebnis	Typischer Einsatz
Stuhl-Mikrobiom-Panel	Zu Hause entnommener Stuhl	Relative Häufigkeit von Actinobakterien und ihren Gattungen	Einordnung von Verdauungsbeschwerden und Veränderungen des Darmmikrobioms
Untersuchung von Gebäudestaub	Gebäudestaub oder Oberflächenabstrich	Actinomyceten-Nachweis, häufig als Punktwert oder Quartil	Untersuchung von Wasserschäden und Innenraumbelastungen
Klinische Erregeridentifizierung	Ein kultiviertes Isolat aus einer klinischen Probe	Identifizierung eines Organismus bis zur Art	Erregernachweis bei Infektionsverdacht

Begriff im Bericht	Bedeutung
Relative Häufigkeit	Der Anteil einer Gruppe an der Bakteriengemeinschaft, ausgedrückt in Prozent
Stamm	Breite taxonomische Gruppe oberhalb von Klasse, Gattung und Art
16S-rRNA-Sequenzierung	Untersucht ein Markergen; meist gute Zuordnung zur Gattung, begrenzte Auflösung bis zur Art
Shotgun-Metagenomik	Untersucht die gesamte erfasste DNA und kann Arten sowie funktionelle Gene zuordnen
Referenz- oder Perzentilskala	Position des Werts innerhalb der Vergleichsgruppe des Labors
ND (nicht nachgewiesen)	Unterhalb der Nachweisgrenze bei dieser Sequenzierungstiefe; der Organismus kann dennoch vorhanden sein

Berichtsskala	Darstellung	Einordnung
Prozentuale relative Häufigkeit	Prozentualer Anteil der erfassten Bakterien	Anteil an der Bakteriengemeinschaft; Vergleich nur bei gleichem Labor und gleicher Methode
Referenz- oder Perzentilband	„Innerhalb der Referenz“ oder ein Perzentil	Bereich der Vergleichsgruppe des Labors; kein persönlicher Zielwert
Quartil oder niedrig/typisch/hoch	Eine Kategorie anstelle eines Zahlenwerts	Grobe Einordnung mit begrenzter Genauigkeit

Stamm	Typischer Anteil im Darm Erwachsener	Kennzeichnende Eigenschaften
Firmicutes (Bacillota)	Dominant	Ballaststoffvergärung; umfasst die meisten Butyratbildner
Bacteroidota	Dominant	Abbau komplexer Kohlenhydrate und Proteine
Actinobakterien	Meist kleiner Anteil, relevant für die Stabilität der Gemeinschaft	Bifidobakterien, Acetat- und Laktatbildung
Proteobakterien (Pseudomonadota)	Meist geringer Anteil	Ein erhöhter Anteil wird unter anderem im Zusammenhang mit Entzündungen untersucht
Fusobacteriota	Normalerweise selten	Vorwiegend im Mund vorkommende Bakterien, teils auch im Darm

Quellenlink zur Tabelle

Herkunft und redaktioneller Prüfstatus

Übertragen und für Nutrient Desk aufbereitet aus dem Ausgangsartikel. Werbliche Mitgliedschafts-, Newsletter- und Laborangebote wurden entfernt. Die Bibliografie bleibt zur eindeutigen Identifikation im Original erhalten. Zahlen und Quellenbezüge wurden übernommen; die Zugehörigkeit der Belege zu einzelnen Aussagen muss vor einer Veröffentlichung überprüft werden. Dieser Entwurf ist nicht zur Indexierung freigegeben.